一、樣本轉(zhuǎn)移：避免污染與損失

 

樣本從采樣器轉(zhuǎn)移至處理容器（如培養(yǎng)皿、離心管）時(shí)，需同時(shí)防范外界污染和目標(biāo)微生物的損耗：

 

無菌環(huán)境操作：

 

轉(zhuǎn)移需在生物安全柜內(nèi)進(jìn)行，操作前用75%酒精消毒采樣器采樣頭、容器表面及操作者手部；使用無菌吸管、移液槍（槍頭需滅菌），避免接觸非無菌區(qū)域（如容器外壁）。

 

誤區(qū)提示：若在開放環(huán)境操作，空氣中的雜菌會混入樣本，導(dǎo)致菌落數(shù)虛高，尤其對低濃度樣本影響顯著。

 

采樣液的充分洗脫：

 

對于撞擊式、篩孔式采樣器，采樣后需用無菌洗脫液（如0.85%無菌生理鹽水、磷酸鹽緩沖液PBS）反復(fù)沖洗采樣頭（至少3次），確保附著的微生物完全進(jìn)入洗脫液；渦旋振蕩1~2分鐘（轉(zhuǎn)速2000~3000rpm），打破微生物聚集的菌團(tuán)，提高分散度。

 

二、樣本稀釋：保證稀釋倍數(shù)的精準(zhǔn)性

 

當(dāng)樣本中微生物濃度較高時(shí)，需梯度稀釋以獲得可計(jì)數(shù)的菌落數(shù)（30~300CFU/皿），稀釋過程的誤差會直接影響結(jié)果準(zhǔn)確性：

 

稀釋液與容器：使用滅菌的梯度稀釋管（如10mL容量的螺旋蓋試管），預(yù)裝9mL無菌稀釋液（誤差需≤±0.1mL）；標(biāo)記清晰稀釋倍數(shù)（10?¹、10?²等），避免混淆。

 

操作規(guī)范：

 

移液時(shí)確保吸管/槍頭尖端接觸液面下1~2cm，避免吸入氣泡；

 

從高濃度向低濃度稀釋時(shí)，每一步均需混勻（用手搓動試管10~15次），確保稀釋均勻；

 

同一稀釋倍數(shù)做2~3個(gè)平行樣，減少隨機(jī)誤差。

 

三、培養(yǎng)與計(jì)數(shù)：控制培養(yǎng)條件，規(guī)范計(jì)數(shù)標(biāo)準(zhǔn)

 

微生物的生長受培養(yǎng)條件影響極大，需嚴(yán)格統(tǒng)一參數(shù)：

 

培養(yǎng)基選擇與制備：

 

根據(jù)目標(biāo)微生物類型選擇培養(yǎng)基（如檢測細(xì)菌用營養(yǎng)瓊脂，真菌用馬鈴薯葡萄糖瓊脂PDA），培養(yǎng)基需滅菌徹底（121℃高壓蒸汽滅菌20分鐘），且pH值符合要求（細(xì)菌pH7.2~7.4，真菌pH5.6~5.8），避免因營養(yǎng)缺陷或酸堿不適導(dǎo)致微生物無法生長。

 

培養(yǎng)條件控制：

 

溫度：細(xì)菌36±1℃，真菌28±1℃，恒溫培養(yǎng)箱需每日校準(zhǔn)溫度（誤差≤±0.5℃）；

 

時(shí)間：細(xì)菌培養(yǎng)48±2小時(shí)，真菌培養(yǎng)72±2小時(shí)，避免培養(yǎng)過短導(dǎo)致菌落漏計(jì)或過長導(dǎo)致菌落重疊。

 

計(jì)數(shù)規(guī)則：

 

選擇菌落數(shù)在30~300CFU的平板計(jì)數(shù)（低于30則結(jié)果誤差大，高于300則菌落易重疊）；

 

若同一稀釋度的平行平板菌落數(shù)差值超過1倍（如10?³稀釋度平板菌落數(shù)為20和50），需重新檢測；

 

計(jì)數(shù)時(shí)需區(qū)分目標(biāo)微生物與污染菌（可通過菌落形態(tài)、染色鏡檢輔助判斷）。

 

四、質(zhì)量控制：全程驗(yàn)證可靠性

 

空白對照實(shí)驗(yàn)：

 

每批樣本處理時(shí)，設(shè)置采樣空白（采樣器不采集空氣，僅用洗脫液沖洗采樣頭后培養(yǎng)）和操作空白（直接將無菌洗脫液接種培養(yǎng)），若空白菌落數(shù)>5CFU，說明存在污染，需重新實(shí)驗(yàn)。

 

陽性對照與回收率驗(yàn)證：

 

定期用已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)菌液（如大腸桿菌、金黃色葡萄球菌）模擬采樣，計(jì)算回收率（回收率需在70%~130%之間，否則需檢查采樣器效率或處理流程）。

 

儀器校準(zhǔn)：

 

采樣器需定期校準(zhǔn)流量（誤差≤±5%），避免因流量不準(zhǔn)導(dǎo)致采樣體積偏差；

 

移液槍、培養(yǎng)箱等設(shè)備需每年經(jīng)計(jì)量認(rèn)證，確保參數(shù)準(zhǔn)確。